孙娜娜 匡野 张志鸿 宿佳
【摘要】卵巢癌是女性生殖器常见的三大恶性肿瘤之一。由于发现时病程多已是晚期,卵巢癌患者的总体疗效欠佳。自噬与卵巢癌关系密切,自噬在卵巢癌中发挥着动态的双重作用,自噬可能成为卵巢癌治疗的靶点。本文综述自噬在卵巢癌中的最新研究成果,包括相关的信号通路、蛋白质、肿瘤抑制基因、miRNAs、化疗耐药和治疗等方面内容。
【关键词】自噬; 卵巢癌; 耐药
卵巢癌是是女性生殖器常见的三大恶性肿瘤之一。卵巢癌的致死率居妇科恶性肿瘤首位[1]。由于卵巢位于盆腔深部,早期病变不易发现,卵巢癌被发现时,病程多已是晚期。尽管近年来手术方法有所改进,但卵巢癌患者总的5年生存率仅30%~40%[2]。主要原因在于大多数晚期患者易复发,并逐渐出现耐药,使卵巢癌患者的总体疗效欠佳。因此,寻找新的方法来治疗卵巢癌是有必要的。越来越多的研究表明,自噬和卵巢癌之间有着密切的联系,这将为卵巢癌的治疗提供新的思路。
1.概念:细胞自噬是一种进化上保守的细胞“自体消化”的方式,它通过再循环细胞内依赖溶酶体的可溶性大分子、细胞器和微生物来维持机体稳态[3]。与凋亡(I型程序性死亡)的不同的是,自噬必须依赖自身溶酶体且形成特征结构—自噬体,故又被称为“II型程序性死亡”。自噬的生理功能有:(1)清除受损细胞、细胞器等,维持内环境稳态;(2)调节固有免疫和适应性免疫;(3)诱导细胞死亡;(4)延长细胞寿命。正常情况下,各类细胞的自噬表达均为基础水平,通过各种应激如饥饿、感染、激素、癌基因、氧化应激和内质网应激,可以被显著激活。根据细胞物质运到溶酶体内的方式,自噬分为三类[4];大自噬,即非溶酶体来源的膜包绕待降解物形成自噬体,然后与溶酶体融合并降解其内容物;小自噬指溶酶体或液泡内膜直接内陷将底物包裹并降解的过程;分子伴侣介导的自噬,是指胞浆内蛋白先结合到分子伴侣后被转运到溶酶体腔中,然后被溶酶体酶消化。本文的自噬指大自噬。
2.机制:自噬的过程受自噬相关基因(autophagy associated gene,Atg)调控,自噬分为四个步骤[5]:(1)起始阶段,当细胞处于饥饿状态或遭受应激时,ULK1复合体被激活,从细胞质转移至内质网,激活III型PI3K复合体。III型PI3K复合体定位于内质网且具有自噬特异性。随后,它转移至线粒体、内质网和高尔基体,再利用核内体或细胞膜,形成一种隔离膜叫吞噬泡。(2)延伸和形成阶段,“货物”的识别和吞噬泡的延伸促进了双层膜结构的形成,即自噬体。有人指出,在自噬过程中,双层膜结构自噬体的形成是具有里程碑意义的事件,它的形成需要两个泛素化复合体:一个是ATG12-ATG5-ATG16泛素化复合体,另一个是PE-LC3泛素化复合体。微管相关蛋白1轻链3(microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3)存在两种形式:存在于细胞质的LC3-I和定位于吞噬泡膜上的LC3-II,LC3合成后以非活性形式存在,即LC3前体。LC3前体需被ATG4裂解成可溶性的LC3-Ⅰ,在ATG3和ATG7的作用下与一分子磷酯酰乙醇胺(phosphatidyl ethanolamine,PE)共价结合,形成LC3-II。(3)成熟阶段—融合,自噬体完成“货物封存”后,与溶酶体膜融合,形成自噬溶酶体。(4)降解阶段,溶酶体酶降解自噬体的内容物,“货物”被分解后释放到细胞质(图1[6])。
在自噬的过程中,哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)扮演着至关重要的角色,在自噬的调控中起着枢纽的作用。目前研究发现,与自噬相关的信号通道有:依赖mTOR的信号通路,包括:P13K-AKT-mTOR通道、LKB1-AMPK-mTOR通路;非依赖mTOR的信号通路,包括:MAPK通路、Ras/Raf/MEK/ERK通路、p53通路、Beclin-l通路、Bcl-2通路等。
PI3K/AKT/mTOR通路中,存在影响自噬的两条途径:一方面,mTOR磷酸化下游p70S6,促使核糖体黏附在内质网上,抑制自噬体膜的形成;另一方面,mTOR可直接调控自噬基因ULK-Atg13-FIP200复合物,从自噬起始环节抑制自噬发生。
MAPK信号通路是广泛存在于细胞内的重要转导通路,能够影响自噬的发生发展。MAPK主要包括c-Jun氨基末端激酶(c-JunN-terminal kinase,JNK),p38MAPK和ERK三个亚家族。JNK通路可通过依赖或不依赖于Beclin1途径调控自噬;p38MAPK信号通路也广泛参与自噬的调控。Ras/Raf/MEK/ERK信号通路,是一条可被广泛激活的MAPK通路。
图1 自噬的过程
3.与肿瘤的关系:目前研究发现,自噬与多种疾病密切相关,许多调节自噬的药物已经被用于临床疾病治疗的研究中,自噬有望成为疾病治疗的新靶点。自噬在肿瘤发生中的作用较为复杂,具体作用目前并不明确。学者们较为认可的是,Alec C.Kimmelman提出的自噬在癌症中的动态作用学说,即肿瘤生成阶段,自噬以抑制作用为主;肿瘤形成之后,自噬则以致癌作用为主,在保护肿瘤和拮抗肿瘤治疗方面发挥关键作用[7]。可见,自噬对肿瘤是一把双刃剑,它既可以启动自噬性死亡抑制肿瘤的发生发展,又可以是肿瘤细胞的一种适应性反应,可以保护肿瘤细胞,减少营养缺乏和药物治疗带来的损伤。
1.相关信号通路:研究发现,PI3K-AKT-mTOR通路、LKB1-AMPK-mTOR通路、Ras/Raf/MEK/ERK通路等与卵巢癌有密切的联系。在卵巢癌的癌细胞中发现持续性的PI3K激活[8]。AKT活性在人卵巢癌细胞中异常升高,正性调节其下游蛋白mTOR,抑制细胞的自噬作用[9]。卵巢癌细胞本身具有核孔的表达和转运因子的表达升高的特点,促使ERK能够顺利进入细胞核,细胞增殖,同时活化其下游mTOR,抑制自噬活性[10]。例如,研究证明,抑制PI3K/AKT/mTOR和Ras/MAPK信号通路,激活自噬,可以限制卵巢癌发展[11];巴拉米等指出,monepantel阻断mTOR/p70S6K信号通路,增强人类卵巢癌细胞的自噬[12];甲基莲心碱激活p38MAPK/JNK信号通路,诱导人卵巢癌细胞的自噬[13]。
2.自噬相关蛋白:(1)LC3-II:在自噬的过程中,LC3-II位于自噬体膜表面,与吞噬泡的数量成正比,这表明LC3-II含量的多少代表了自噬发生的程度。研究表明,与良性和交界性卵巢肿瘤相比,卵巢癌组织中的LC3水平较低;卵巢癌FIGO III期和IV期患者的LC3表达水平比I期和II期低[14];自噬相关细胞死亡的增加,需上调卵巢癌组织和细胞的LC3-II水平[15]。(2)Beclin1:在自噬体形成过程中,Beclin1参与III型PI3K(VPS34)复合体(Beclin1-VPS34-Atg14)的形成。健康人、良性和交界性卵巢肿瘤患者体内的Beclin1含量,显著高于恶性的上皮性卵巢癌患者[14];Beclin1的水平与卵巢癌FIGO临床分期和组织学分级是呈负相关的[14];Beclin1水平高的患者比Beclin1水平低的患者的生存时间更长[16]。(3)Bcl-2:Bcl-2(B淋巴细胞瘤-2蛋白)与Beclin1结合,可抑制自噬。研究表明,卵巢癌患者Beclin1的表达与Bcl-xL的表达呈负相关,Bcl-xL是Bcl-2家族的一个抗凋亡蛋白[17];低Beclin1/高Bcl-xL卵巢癌组表现出最低的存活率[17]。
随着卵巢癌的进展,自噬相关蛋白的含量显著地变化,即自噬的水平明显地改变。可见,自噬相关蛋白的含量对卵巢癌的进展程度有判断价值。
3.肿瘤抑制基因:(1)Ras同源基因家族成员Ⅰ(A ras homologue member I,ARHI)是一种抑制肿瘤的印记基因,主要是启动细胞程序性死亡和抑制癌细胞生长。研究表明,约60%的卵巢癌患者的ARHI表达降低[17];ARHI过表达抑制PI3K/AKT信号通路,并减少Bcl-2在卵巢癌细胞的表达,引起自噬水平的上升[17]。(2)p53是一个重要的抑癌基因,通过使癌细胞凋亡而防止癌变。研究表明,超过96%的高分化浆液性卵巢癌患者的p53基因发生了突变,突变的p53基因促进肿瘤分化、转移以及应答类固醇激素,导致卵巢癌进展[18];Kong等人发现,野生型p53诱导细胞凋亡,并减弱自噬,使多药耐药的人类卵巢癌细胞株对长春新碱、顺铂、吡柔比星和依托泊苷变得敏感。而突变型p53增加自噬性细胞死亡-坏死和凋亡,逆转多药耐药[19]。尽管大量证据表明p53和自噬之间有密切的关系,但目前有关卵巢癌自噬与p53联系的研究是有限的。(3)磷酸酶和张力蛋白同源物(phosphatase and tensin homology deleted on chromosome ten,PTEN)蛋白是一种最常见的经受突变的肿瘤抑制基因的产物,具有双特异性磷酸酶活性。PTEN可使PI3K/AKT/mTOR信号通路中的磷脂酰肌醇三磷酸去磷酸化,启动自噬。而PTEN基因缺失的癌细胞减弱自噬,促进肿瘤的发生。此外,研究发现卵巢癌细胞经常发生PTEN基因突变[18]。
肿瘤抑制基因突变、缺失或表达水平改变等情况,可调控自噬的活性,进一步导致卵巢癌的发生发展。但目前卵巢癌自噬与肿瘤抑制基因关系的研究是不充分的,尚需进一步的探究。
4.miRNAs:miRNAs是最受欢迎的调控基因表达的非编码RNA之一,它在转录后水平调控基因的表达。在卵巢癌,致癌的miRNA miR-30d可直接抑制许多自噬相关基因,包括Beclin1、BNIP3L、ATG12、ATG5 、ATG2,并抑制LC3-I转化为LC3-II,减弱自噬[20]。此外,转染肿瘤抑制基因miR-29b,可以直接抑制卵巢癌细胞ATG9 mRNA的表达[21],由此推测ATG9可能是miR-29b的直接靶点。我们可见一斑,有些miRNA是自噬相关mRNA直接靶点,可以直接调控细胞自噬,参与卵巢癌的发展。卵巢癌自噬和miRNAs之间有广泛的潜在联系,但其相互作用机制未明了,需未来的进一步研究。
5.化疗耐药:顺铂是卵巢癌的一线治疗药物。然而,很多卵巢癌患者逐渐对顺铂产生耐药性,导致治疗失败。研究人员使用自噬抑制剂和自噬基因Beclin1小干扰RNA后,卵巢癌细胞的自噬被抑制,顺铂所致的细胞死亡和凋亡明显增加[22];Bao等发现,NF-E2相关因子(nuclear factor erythroid 2-related factor)激活卵巢癌自噬,导致顺铂耐药[23];肖兰等人的研究表明,癌蛋白和Yes相关蛋白可增加人类卵巢癌细胞的自噬,诱导顺铂耐药性的产生[24]。
紫杉醇同样为卵巢癌化疗的一线药物,也存在化疗耐药。张松法等人发现,卵巢癌自噬可以使卵巢癌对紫杉醇耐药;硫氧还蛋白域17可增强卵巢癌自噬,导致卵巢癌对紫杉醇耐药[25]。
自噬在顺铂治疗卵巢癌时发挥保护癌细胞的作用,即自噬导致人类卵巢癌顺铂耐药的发生;同样,自噬可拮抗紫杉醇的治疗作用。由此推断,自噬可能导致人类卵巢癌化疗耐药的发生。
1.靶向治疗:高强度的自噬通常导致细胞凋亡,故增强自噬可作为卵巢癌的一种治疗方式。对此,人们已进行了广泛的研究。达沙替尼和双联苄类化合物可诱导LC3-II、Beclin1和Atg12的表达,抑制卵巢癌细胞的生长[26];MORAB-003是一个人源化的抗叶酸受体α的单克隆抗体,可增加卵巢癌LC3-II表达并促进吞噬泡形成,引起人类卵巢癌细胞死亡[26]。这些结果的吸引人之处—这些药物与顺铂不同,其通过增强自噬来治疗卵巢癌。
目前,研究者已对自噬治疗卵巢癌的机制进行了深入的研究。靶向调控P13K-AKT-mTOR通道、LKB1-AMPK-mTOR通路、MAPK信号通路通路等信号通路可为卵巢癌的治疗提供新思路。达沙替尼是一种酪氨酸激酶抑制剂,能降低AKT、mTOR活性,诱导卵巢癌细胞自噬性死亡,并与Bcl-2的表达有关[27];白藜芦醇、染料木黄酮不仅能抑制卵巢癌细胞对葡萄糖的摄取,而且能诱导自噬的产生而抑制细胞生长,其机制同样与抑制P13K-AKT-mTOR通路有关[28]。
2.氧化应激:大量研究表明,氧化应激中产生的活性氧能诱导自噬发生,而自噬能缓解氧化应激引起的损伤,从而保护细胞存活。研究证实,在卵巢癌裸鼠移植瘤模型,子宫内膜样癌SKOV-3细胞对苯胂酸是耐药的。这是由于其能够对抗苯胂酸诱发的氧化应激,氧化应激诱导自噬,从而保护癌细胞免遭死亡;联合应用mTORC1抑制剂和苯胂酸可以协同抑制SKOV-3细胞扩增;最近,Wang等[29]人认为,自噬可以保护卵巢癌相关的成纤维细胞免受氧化应激的伤害,阻断自噬可以提高卵巢癌相关成纤维细胞对化疗药物顺铂的敏感性。如何通过抑制自噬来提高氧化应激,将为卵巢癌的治疗提供新的思路。
3.化疗:有研究表明,自噬是卵巢癌化疗的一个拮抗因子。顺铂耐药的卵巢癌与自噬的上调有关,抑制顺铂耐药卵巢癌细胞的自噬,可提升顺铂的治疗效果。研究发现,双氢青蒿素、硼替佐米及蛋氨酸合成酶还原酶基因的表达沉默,可抑制卵巢癌细胞的自噬,阻碍顺铂耐药的发生并增强顺铂的抗癌效果[30];最近的研究显示,一种新型自噬抑制剂—洋橄榄叶素可高效地治疗卵巢癌,在缺氧条件下或与顺铂联合应用时,洋橄榄叶素可降低细胞活性[31]。上述研究表明,化疗联合抑制自噬可能成为卵巢癌的替代疗法,并能够增强特定类型化疗药物的癌症杀伤作用。在一些特定的临床背景下,自噬抑制剂与肿瘤化疗联合或能取得良好的疗效。
4.放疗:卵巢癌的一线化疗方案失败后,放射治疗可作为一种姑息治疗。研究表明,放射治疗卵巢癌的机制与自噬有关。最近一项体内研究表明,穿心莲内酯可增加Beclin1、ATG5和LC3-II的水平,它是人类卵巢癌SKOV3移植瘤的强效放疗增敏剂[32]。自噬在卵巢癌放疗中具有巨大的潜在价值,需要进一步的研究。
综上所述,自噬在卵巢癌中发挥动态的双重作用,这是目前学者们较认可的观点。自噬在卵巢癌中的作用机制,涉及到自噬相关信号通路的激活或抑制、自噬相关的肿瘤抑制基因的突变或缺失和miRNAs及自噬相关蛋白的异常表达等。尽管大量证据表明自噬有望成为卵巢癌潜在的治疗靶点,但卵巢癌自噬的确切机制尚需研究。
参考文献
1 谢幸,苟文丽.妇产科学.第8版.北京:人民卫生出版社,2013:321-321.
2 Siegel RL,Miller KD,Jemal A.Cancer statistics,2016.CA Cancer J Clin ,2016,66:10-29.
3 Mizushima N,Levine B,Cuervo AM,et al.Autophagy fights disease through cellular self-digestion.Nature,2008,451:1069-1075.
4 Codogno P,Meijer AJ.Autophagy and signaling:their role in cell survival and cell death.Cell Death Differ,2005,12:1509-1518.
5 Noda NN,Inagaki F.Mechanisms of Autophagy.Annu Rev Biophys,2015,44:101-122.
6 Lei Z,Yu Z,Wang W,et al.Autophagy as an emerging therapy target for ovarian carcinoma.2016.doi:10.18632/oncotarget.13080.
7 Kimmelman AC.The dynamic nature of autophagy in cancer.Genes Dev,2011,25:1999-2010.
8 Degtyarev M,Mazière AD,Orr C,et al.AKT Inhibition Promotes Autophagy and Sensitizes PTEN-Null Tumors to Lysosomotropic Agents.J Cell Bio,2008,183:101-116.
9 Hosokawa N,Hara T,Kaizuka T,et al.Nutrient-dependent mTORC1 association with the ULK1-Atg13-FIP200 complex required for autophagy.Mol Biol Cell,2009,20:1981.
10 Winter JN,Jefferson LS,Kimball SR.ERK and AKT signaling pathways function through parallel mechanisms to promote mTORC1 signaling.Am J Physiol Cell Physiol,2011,300:1172-80.
11 Lu Z,Yang H,Sutton MN,et al.ARHI (DIRAS3) induces autophagy in ovarian cancer cells by downregulating the epidermal growth factor receptor,inhibiting PI3K and Ras/MAP signaling and activating the FOXo3a-mediated induction of Rab7.Cell Death Differ,2014,21:1275-1289.
12 Farnaz B,Pourgholami MH,Mekkawy AH,et al.Monepantel induces autophagy in human ovarian cancer cells through disruption of the mTOR/p70S6K signalling pathway.Am J Cancer Res,2014,4:558-571.
13 Xu L,Zhang X,Li Y,et al.Neferine induces autophagy of human ovarian cancer cells via p38 MAPK/ JNK activation.Tumour Biol,2016,257:1-9.
14 Shen Y,Li DD,Wang LL,et al.Decreased expression of autophagy-related proteins in malignant epithelial ovarian cancer.Autophagy,2008,4:1067-1068.
15 Shuvayeva G,Bobak Y,Igumentseva N,et al.Single Amino Acid Arginine Deprivation Triggers Prosurvival Autophagic Response in Ovarian Carcinoma SKOV3.Biomed Res Int,2014,2014:90-106.
16 Lin HX,Qiu HJ,Zeng F,et al.Decreased expression of Beclin 1 correlates closely with Bcl-xL expression and poor prognosis of ovarian carcinoma.Plos One,2012,8:132-132.
17 Li J,Cui G,Sun L,et al.ARHI overexpression induces epithelial ovarian cancer cell apoptosis and excessive autophagy.Int J Gynecol Cancer,2014,24:437-443.
18 Ren YA,Mullany LK,Liu Z,et al.Mutant p53 promotes epithelial ovarian cancer by regulating tumor differentiation,metastasis,and responsiveness to steroid hormones.Cancer Res,2016,doi:10.1158/0008-5472.CAN-15-1046.Epub 2016 Mar 10.
19 Kong D,Ma S,Bing L,et al.The different regulatory effects of p53 status on multidrug resistance are determined by autophagy in ovarian cancer cells.Biomed Pharmacother,2012,66:271-278.
20 Yang X,Zhong X,Tanyi JL,et al.mir-30d regulates multiple genes in the autophagy pathway and impairs autophagy process in human cancer cells.Biochem Biophys Res Commun,2013,431(3):617-622.
21 Dai F,Zhang Y,Chen Y.Involvement of miR-29b signaling in the sensitivity to chemotherapy in patients with ovarian carcinoma.Hum Pathol,2014,45:1285-1293.
22 Ai Z,Lu Y,Qiu S,et al.Overcoming cisplatin resistance of ovarian cancer cells by targeting HIF-1-regulated cancer metabolism.Cancer Lett,2016,373:36-44.
23 Bao L,Jaramillo MC,Zhang Z,et al.Induction of autophagy contributes to cisplatin resistance in human ovarian cancer cells.Mol Med Rep,2015,11:91-98.
24 Xiao L,Shi XY,Zhang Y,et al.YAP induces cisplatin resistance through activation of autophagy in human ovarian carcinoma cells.Onco Targets,2016,9:1105-1114.
25 Zhang SF,Wang XY,Fu ZQ,et al.TXNDC17 promotes paclitaxel resistance via inducing autophagy in ovarian cancer.Autophagy,2015,11:225-38.
26 Wen Y,Graybill WS,Previs RA,et al.Immunotherapy Targeting Folate Receptor Induces Cell Death Associated with Autophagy in Ovarian Cancer.Clin Cancer Res,2014,21:448-459.
27 Le XF,Mao W,Zhen LM,et al.Dasatinib induces autophagic cell death in human ovarian cancer.Cancer,2010,116(21):4980-90.
28 Gossner G,Choi M,Tan L,et al.Genistein-induced apoptosis and autophagocytosis in ovarian cancer cells.Gynecol Oncol,2007,105:23-30.
29 Wang Q,Xue L,Zhang X,et al.Autophagy protects ovarian cancer-associated fibroblasts against oxidative stress.Cell Cycle,2016,15:1376-1385.
30 Chao Z,Qiu X.Andrographolide radiosensitizes human ovarian cancer SKOV3 xenografts due to an enhanced apoptosis and autophagy.Tumour Biol,2015,36:1-7.
31 Zhao X,Fang Y,Yang Y,et al.Elaiophylin,a novel autophagy inhibitor,exerts antitumor activity as a single agent in ovarian cancer cells.Autophagy,2015,11:1849-1863.
32 Chao Z,Qiu X.Andrographolide radiosensitizes human ovarian cancer SKOV3 xenografts due to an enhanced apoptosis and autophagy.Tumour Biol,2015,36:1-7.
基金项目:黑龙江省青年科学基金项目(QC2014C098);2015年度黑龙江省博士后科研启动金(LBH-Q15099)
作者单位:150086,哈尔滨医科大学附属第二医院妇产科
通讯作者:匡野(kuangye-blue@163.com)
(收稿日期:2017-04-18)