·实验研究·
胚胎停育是指因受精卵缺陷或母体存在不利妊娠的因素,如遗传因素、免疫因素、感染、母体内分泌失调、细胞增殖和凋亡、血栓因素、解剖异常、环境因素等,导致早期或中期胚胎死亡,全部或部分的组织留在宫腔内未能自然排出的一种病理性妊娠,病因十分复杂,有约40%~50%的胚胎停育原因未明[1]。胚胎停育是一种特殊类型的自然流产,近年来,发病率有明显升高趋势,这对孕妇的身心健康造成严重影响,因此,探究胚胎停育的病因,为早期预防以及改善妊娠结局提供新的理论依据显得尤为重要。叉头框蛋白O家族的核心是叉头框转录因子3a(forkhead box O transcription factors 3a,FoxO3a),目前研究发现其在细胞、组织与胚胎发育、卵泡成熟、血管生成、免疫反应及细胞凋亡等过程中发挥重要作用[2-3]。β-连环蛋白(β-catenin)是一种多功能胞内蛋白,既是Wnt/β-catenin通路中的信号传导分子,又是细胞间重要黏附分子,这两种功能可相互独立发挥作用。一方面,可作为转录辅助激活因子,参与转录的激活;另一方面,可参与锚定细胞骨架与E-钙黏蛋白(E-cadherins),涉及细胞-细胞黏附接头的组成,在子宫内膜蜕膜化期间的细胞黏附中起重要作用[4]。本文旨在使用免疫组织化学技术SP法检测胚胎停育患者绒毛中FoxO3a和β-catenin的表达情况,初步探讨二者的作用及其与绒毛滋养细胞过度凋亡的关系。
选取2017年10月—2018年6月就诊于包钢集团第三职工医院妇产科门诊,经彩超证实为胚胎停育者30例,停经7~11周,年龄24~37岁,平均年龄(29.6±2.5)岁。随机选取同期正常妊娠,经彩超证实为宫内早孕有胎心搏动,自愿要求负压吸引术流产者30例,停经6~9周,年龄20~40岁,平均年龄(27.1±4.1)岁。两组研究对象既往月经周期规律,在取标本前3个月内均未服用激素类药物,未放置宫内节育器,无生殖道感染,无内外科合并症,术前签署知情同意书。比较两组年龄、孕周及体重指数,差异均无统计学意义(P>0.05),男方年龄差异有统计学意义(P<0.05),详见表1。
表1 两组患者一般情况比较
Table 1 Comparison of basic information between two groups
GroupNFemale age(years)Menopause Period(days)Body mass index(kg/m2)Husband age(years)Missed abortion group 3029.6±2.558.1±5.921.9(20.4,22.6)30.4±2.7∗Normal early pregnant group 3027.1±4.155.6±4.922.1(21.3,22.8)28.4±3.1
*Compared with normal early pregnant group,P<0.05
1.标本采集与免疫组织化学技术SP法处理:负压400 mmHg吸引出入选研究组、对照组的绒毛组织及蜕膜等宫腔内容物后,绒毛组织置于生理盐水中漂洗,洗净表面血迹后取标本约0.5×0.5×0.5 cm3置于体积分数为10%中性甲醛固定液中固定并石蜡包埋,每个组织标本蜡块按厚度4 μm连续切片2张,分别采用链菌素亲生物蛋白-过氧化物酶连接法(streptavidn peroxides conjugated method,S-P法)检测FoxO3a和β-catenin的表达。常规脱蜡水化、抗原热修复后,严格按试剂盒(KIT-9710,购自福州迈新公司)说明书进行实验步骤。兔抗人FoxO3a多克隆抗体(ab70314)购于美国ABCAM公司,鼠抗人β-catenin单克隆抗体(610154)购自美国BD生物技术公司,二者稀释浓度均为1:200。自然晾干后阅片,阳性对照为试剂公司所提供的阳性片,PBS代替一抗作为阴性对照。
2.结果判定:由2位病理医师采用双盲法在光镜下进行观察和评定。每张切片随机选取 5个视野,每个视野计数100个细胞。FoxO3a及β-catenin均主要表达于滋养细胞的细胞质和细胞核,β-catenin在正常妊娠组部分表达于细胞膜,二者阳性信号均为出现淡黄色、棕黄色或棕褐色颗粒。根据显色强度和阳性细胞百分率进行半定量判定。(1)按照显色强度分为无着色、淡黄色、棕黄色、棕褐色分别评为0、1、2、3分。(2)按照阳性细胞百分率计为<5%计0分,5%~25%计1分,26%~50%计2分,>50%计3分。最后根据两者乘积,(1)×(2),将染色情况分为4级:0~1分为(-),2~3分为(+),4~6分为(++),>6分为(+++)。乘积<2分判定为阴性(-),≥2分判定为阳性(+)。
3.统计学处理:采用SPSS 21.0软件对数据进行统计分析。计量资料采用表示,数据符合正态分布用独立样本t检验,不符合正态分布采用中位数表示,用Mann-Whitney U检验,FoxO3a及β-catenin的阳性表达率用χ2检验,二者的相关性比较用Spearman相关分析,P<0.05为差异有统计学意义。
FoxO3a主要表达于胚胎停育组滋养细胞的细胞质和(或)细胞核,正常妊娠组滋养细胞的细胞质(图1)。FoxO3a在胚胎停育组、正常妊娠组绒毛滋养细胞中阳性表达率分别为36.7%(11/30)和63.3%(19/30),FoxO3a在胚胎停育组阳性表达率低于正常妊娠组,差异有统计学意义,见表2。
β-catenin主要表达于胚胎停育组滋养细胞的细胞质和(或)细胞核,正常妊娠组滋养细胞的细胞膜和(或)细胞质(图2)。β-catenin在胚胎停育组、正常妊娠组绒毛滋养细胞中阳性表达率分别为56.7%(17/30)和26.7%(8/30),β-catenin在胚胎停育组阳性表达率高于正常妊娠组,差异有统计学意义,见表2。
FoxO3a与β-catenin在胚胎停育组中的表达呈负相关性(rs=-0.591,P<0.05),二者在正常妊娠组中的表达无相关性(rs=-0.099,P>0.05),见表3。
图1 FoxO3a表达的病理图(免疫组化SP染色,×100)
Figure 1 The pathology of figure of FoxO3a′s expression (immunohistochemical SP staining, ×100)
表2 FoxO3a和β-catenin在胚胎停育组和正常妊娠组中的表达[例(%)]
Table 2 The expressions of FoxO3a and β-catenin in missed abortion group and normal early pregnant group [n(%)]
GroupnFoxO3a+-β-catenin+-missed abortion group3011(36.7)∗19(63.3)17(56.7)∗13(43.3)normal earlypregnant group3021(70.0)9(30.0)8(26.7)22(73.3)total6032(53.3)28(46.7)25(41.7)35(58.3)
*Compared with normal early pregnant group, P<0.05
图2 β-catenin表达的病理图(免疫组化SP染色,×100)
Figure 2 The pathology of figure of β-catenin′s expression (immunohistochemical SP staining, ×100)
表3 FoxO3a和β-catenin在胚胎停育组和正常妊娠组中表达的相关性
Table 3 The Pearson analysis of the expressions of FoxO3a and β-catenin in missed abortion group and normal early pregnant group
FoxO3aβ-cateninmissed abortion group-+totalβ-cateninearly pregnant group-+total-41519639+921116521total13173022830
一定程度的滋养细胞凋亡在正常妊娠生理活动中是存在的[5],主要发生在合体滋养层细胞,在胚胎生长发育过程中,增殖-凋亡的状态平衡利于形成绒毛内血管及分支并保持相关的侵袭能力[6]。当某因素导致增殖-凋亡的平衡状态被打破后,绒毛胎盘血管增殖不良,滋养细胞侵袭力降低,绒毛凋亡增加,生长发育受阻,最终导致胚胎停育,这可能是早期自然流产发生的一个重要病理过程。近期研究表明,自然流产妊娠组织中存在着过度凋亡,而且过度凋亡的发生与促凋亡基因的高表达有关[1]。有学者研究显示,FoxO3a可诱导促凋亡因子表达,进而激活半胱氨酸蛋白酶(Caspases),使卵母细胞、淋巴细胞、神经元以及肿瘤细胞等多种细胞发生凋亡[7-9]。而FoxO3a在合体滋养细胞胞质的高表达可有利于维持妊娠[10]。FoxO3a在细胞核和细胞质等亚细胞结构中的定位受磷脂酰肌醇-3激酶/蛋白激酶B(PI3K/Akt) 信号通路影响,对凋亡的调节产生重要作用[11-13]。KIM等[11]推测正常早期妊娠滋养细胞中FoxO3a磷酸化后被转运至胞质处在失活状态,阻碍凋亡基因表达可使合体滋养细胞维持正常生理状态;而稽留流产滋养细胞FoxO3a在胞质中表达下降,并出现较多胞核内表达,去磷酸化的 FoxO3a大部分进入胞核,使凋亡基因表达最终加速细胞凋亡,从而导致绒毛正常发育的平衡状态失衡引起胚胎停育。本实验与其研究结果一致,本实验中FoxO3a在胚胎停育组绒毛滋养细胞中阳性表达率低于正常妊娠组,差异有统计学意义。
胚胎发育过程中Wnt/β-catenin信号通路参与调控胚胎干细胞分化、凋亡和定位等生物学过程。胚胎附着子宫内膜的过程是着床,成功着床的标志是胎盘血管形成及母体蜕膜滋养细胞侵袭。Wnt/β-catenin信号通路调控胚胎着床包括2个方面:激活胚胎植入位点上皮细胞调节靶基因的表达,使胚胎着床后的血管重塑胎盘形成;在胚胎植入前激活子宫环形平滑肌,调节胚胎对子宫内膜的黏附和侵入。胚胎着床窗子宫内膜β-catenin蛋白表达暂时性下调或缺失,有利于促进子宫内膜上皮细胞的分离和胚胎着床[14]。本实验发现,β-catenin在胚胎停育组绒毛滋养细胞中阳性表达率高于正常妊娠组,差异有统计学意义。这提示β-catenin在胚胎停育过程中扮演着重要角色。
本实验得出胚胎停育组绒毛滋养细胞中FoxO3a与β-catenin表达呈负相关,提示二者可能共同参与了细胞过度凋亡和胚胎停育的过程。二者在诸多细胞生命活动中有重要意义,其相互之间作用可影响各自表达和功能,从而调控细胞凋亡。如FoxO3a能可逆性同T细胞因子(TCF)/淋巴增强因子(LEF)竞争结合β-catenin,阻断Wnt信号通路下游靶基因的激活。FoxO3a靶基因GABARAPL1可通过促进自噬降解Dvl2蛋白抑制Wnt/β-catenin信号通路[15]。有学者在一项实验中证实当实验组加入抑制剂后,β-catenin的表达被抑制,而FoxO3a的表达较对照组升高,提示FoxO3a受Wnt/β-catenin负调控,可能是其下游分子[16]。综上所述,FoxO3a与β-catenin在胚胎停育过程中发挥重要作用,更深入研究二者在发生胚胎停育信号通路中的具体机制,明确胚胎停育细胞过度凋亡的发病机理,将为早期预防及改善妊娠结局提供新的理论依据。
1 陈飞,黄河玲.胚胎停育相关因素研究进展.中国计划生育学杂志,2016,24:494-497.
2 Webb AE,Kundaje A,Brunet A.Characterization of the direct targets of FOXO transcription factors throughout evolution.Aging Cell,2016,15:673-685.
3 Ozbilgin K,Kahraman B,Turan A,et al.The expression of Forkhead transcription factors in decidua and placenta in patients with missed abortion.Clin Exp Obstet Gynecol,2015,42:510-514.
4 黄静,何俊琳,刘学庆,等.β-TrCP和β-连环蛋白在小鼠胚胎着床过程中子宫内膜的表达.细胞生物学杂志,2009,31:243-249.
5 Avagliano L,Terraneo L,Virgili E,et al.Autophagy in normal and abnormal early human pregnancies.Reprod Sci,2015,22:838-844.
6 Kohan-Ghad HR,Kadam L,Jain C,et al.Potential role of epigenetic mechanisms in regulation of trophoblast differentiation,migration,and invasion in the human placenta.Cell Adh Migr,2016,10:126-135.
7 Zhang X,Zhang H,Gao Q,et al.Sohlh2 inhibits the apoptosis of mouse primordial follicle oocytes viaCkit /PI3K/Akt /Foxo3a signalling pathway.Reprod Biomed Online,2015,30:514- 521.
8 VanGrevenynghe J,Cubas RA,Noto A,et al.Loss of memory B cells during chronic HIV infection is driven by Foxo3a- and TRAIL-mediated apoptosis.J Clin Invest,2011,121:3877 -3888.
9 Jia Y,Mo SJ,Feng QQ,et al.EPO-Dependent Activation of PI3K/Akt/FoxO3a Signalling Mediates Neuroprotection in In Vitro and In Vivo Models of Parkinson′s Disease.J Mol Neuro Sci,2014,53:117-124.
10 潘翠娇,王玉霞.稽留流产患者滋养细胞中FoxO3a转录因子的表达.暨南大学学报(自然科学与医学版),2017,38:504-508.
11 Kim H J,Lee S Y,Kim CY,et al.Subcellular localization of FOXO3a as a potential biomarker of response to combined treatment with inhibitors of PI3K and autophagy in PIK3CA-mutant cancer cells.Oncotarget,2017,8:6608-6622.
12 Liu MH,Li GH,Peng LJ,et al.PI3K/Akt/FoxO3a signaling mediates cardioprotection of FGF-2 against hydrogen peroxide-induced apoptosis in H9c2 cells.Mol Cell Biochem,2016,414:57-66.
13 Bao W,Pan F,Chen L,et al.The PI3K/AKT pathway and FOXO3a transcription factor mediate high glucose-induced aspoptosis in neonatal rat ventricular myocytes.Iran Red Crescent Med J,2014,16:e14914.
14 谢宝国,朱伟杰.Wnt/β-catenin信号通路在胚胎着床和发育中的作用.生殖与避孕,2013,33:328-332.
15 罗慧.AKT/β-catenin/FoxO3a信号通路在亚硒酸钠诱导结直肠癌细胞凋亡中机制研究.北京协和医学院,2013.
16 孙文冲.熊果酸经SFRP4/Wnt/β-catenin/Foxo3a/p27通路调控血管平滑肌细胞增殖.青岛大学,2016.