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6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶缺乏致四氢生物蝶呤缺乏症的诊断及1种新突变的发现

何江 杨曦 邹红云 张琼 余伍忠

【摘要】 目的探讨6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶(PTPS)缺乏所致四氢生物蝶呤缺乏症(BH4D)的诊断及其基因突变特点,为开展BH4D的基因诊断提供依据。方法(1)归纳、总结临床症状、体征,复检血苯丙氨酸(Phe)浓度;(2)进行Phe(100 mg/kg)+四氢生物蝶呤(BH4)(20 mg/kg)负荷试验、尿蝶呤谱分析、红细胞二氢蝶呤还原酶(DHPR)活性测定;(3)采用PCR-限制性片段长度多态性(PCR-RFLP)及常规基因测序法进行PTPS基因突变检测,分析基因型与临床表型的关系。结果(1)患儿男,出生72 h后经新生儿疾病筛查检出其Phe浓度为176.1 μmoL/L,生后20 d复查仅出现肌张力稍低下、皮肤稍白,复检其Phe浓度升高至222.6 μmoL/L;(2)负荷试验前血Phe浓度271.2 μmol/L,Phe负荷3 h上升至756.0 μmol/L,BH4负荷6 h血Phe浓度迅速降至283.2 μmol/L;(3)尿新蝶呤为2.95 mmol/molCr,生物蝶呤为0.08 mmol/molCr,生物蝶呤百分比为2.64%;(4)DHPR活性1.71 nmol/(min·5 mm disc),为正常对照的45%,排除DHPR缺乏症;(5)患儿PTPS基因突变类型为c.259C>T (P87S)及IVS1-129A>G,IVS1-129A>G突变是首次报道的新突变,筛查50例正常儿童未检测到该突变。结论(1)BH4负荷6 h后血Phe浓度下降迅速,尿生物蝶呤明显降低,B%持续<10%,DHPR活性正常是6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶缺乏症(PTPSD)的确诊依据;(2)P87S为中国人PTPS的热点突变,采用PCR-RFLP方法对热点突变进行快速筛查可提高基因诊断效率;(3)IVS1-129A>G可能是PTPS基因新的致病突变。

【关键词】6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶(PTPS); 四氢生物蝶呤缺乏症((BH4D); 高苯丙氨酸血症(HPA); 突变分析

四氢生物蝶呤缺乏症(tetrahydrobiopterin deficiency,BH4D)属于常染色体隐性遗传病,是一种特殊类型的苯丙酮尿症(phenylketonuria,PKU),是由于苯丙氨酸(phenylalanine,Phe)等芳香族氨基酸羟化酶辅助因子——四氢生物蝶呤(tetrahydrobiopterin,BH4)合成或代谢途径中某种f酶的先天性缺陷导致的一种芳香族氨基酸代谢障碍,可影响脑内神经递质合成,致使患儿出现严重的神经系统损害症状、体征和智能障碍[1]。现有研究表明,共有5种酶参与辅酶BH4的合成或代谢循环[2],任何一种酶基因的缺陷均可导致BH4D,6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶(6-pyruvoyl tetrahydropterin synthase,PTPS)是BH4合成必需的催化酶,PTPS缺乏是导致BH4D的最主要原因[3]。目前为止,国际相关网站(http://www.biopku.org/biomdb/search-results.asp)已报道的PTPS基因突变共53种(图4)。研究表明,中国人80%以上的PTPS突变为N52S(c.155A>G)、P87S(c.259C>T)和D96N(c.286G>A)突变[4-6]。新疆地区开展BH4的诊断及鉴别诊断起步较晚,本文通过新生儿疾病筛查并诊断了新疆首例6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶缺乏症(PTPSD)患者,现就该例PTPSD的诊断过程、鉴别诊断标准及基因突变分析结果报道如下。

对象与方法

一、对象

患儿,男,为第1胎第1产,于2013年5月6日在本院产科剖宫产出生,胎龄38+3周,生后无窒息,出生体重3 000 g,身长50 cm,出生72 h(充分哺乳6次以上)采血经新生疾病疾病筛查测定血苯丙氨酸(Phe)为176.1 mmoL/L,召回复查。患儿出生20 d后测定血苯丙氨酸(Phe)为222.6 mmoL/L,确诊为高苯丙氨酸血症(HPA),采集尿液、血斑等标本进一步行鉴别诊断。复查临床症状体征有表情及反应正常、头发正常、眉毛正常、口水多、皮肤稍白、四肢肌张力稍有降低,尿无特殊异味。

二、方法

1.尿蝶呤谱分析:采用Waters公司510型高效液相色谱仪(HPLC),用反相层析法对所有血Phe增高(>120 μmol/L)者或伴有严重肌张力低下等神经系统损害表现者进行尿新蝶呤(neopterin,N)、生物蝶呤(biopterin,B)浓度测定,并计算B%=B/(N+B)×100%。

鉴别诊断标准包括,(1)N明显增加,B明显降低,N/B增高,B%<10%,甚至5%或测不出,考虑为PTPS缺乏;(2)N可正常或稍高,B明显增加,N/B降低,B%增高,有些患者尿蝶呤谱也可正常,需进一步做红细胞二氢生物蝶呤还原酶(dihydrobiopterin reductases, DHPR)活性测定,考虑为DHPR缺乏;(3)N、B均降低,N/B正常,考虑为鸟苷三磷酸环水解酶(guanosine triphosphate cyclohydrolase,GTPCH)缺乏;⑷如果N/B正常,BH4(+),可考虑为经典型PKU。

2.BH4负荷试验:BH4负荷试验或Phe和BH4联合负荷试验是一种快速而可靠的辅助诊断试验。在血Phe浓度较高(>600 μmol/L)情况下,可直接给予口服BH4片(20 mg/kg),BH4服前和服后2、4、6、8、24 h分别取血作Phe测定,此外,服前和服后4~8 h分别留尿做尿蝶呤分析。对于血Phe≤600 μmol/L者,可作Phe+BH4联合负荷试验,即给患儿先口服Phe(100 mg/kg),服后3 h再口服BH4。于服Phe前和后1、2、3 h,服BH4后2、4、6、8、24 h分别采血测Phe浓度。

鉴别诊断标准包括(1)经典型PKU者因苯丙氨酸羟化酶(PAH)缺乏,血Phe浓度无明显变化;(2)BH4缺乏者,当给予BH4后,因其PAH活性恢复,血Phe明显下降;(3)PTPS缺乏者,血Phe浓度服用BH4后4~6 h可下降至正常;(4)DHPR缺乏者血Phe浓度在用BH4后8 h或以后可下降至正常,也有部分患者血Phe不能降至正常,需作DHPR活性测定予以助诊。

3.红细胞DHPR活性测定[7]:取外周血2滴于干滤纸上,血斑直径>5 mm,采用日本岛津UV-2450型双光束分光光度计进行检测,每次检测同时测定正常对照标本,以得出待测标本DHPR活性为正常对照活性的百分比(%),DHPR缺乏者其酶活性极低或测不出。

4.PTPS基因突变分析:采集患儿及其父母外周静脉血分离白细胞,采用酚-氯仿法抽提DNA。首先对已报道的N52S、P87S和D96N 3种热点突变进行筛检,对无热点突变者,按常规方法扩增PTPS基因所有外显子及第1内含子进行突变检测,PTPS基因引物序列及扩增产物见表1。

表1PTPS基因引物序列及扩增产物

名称引物序列退火温度(℃)产物名称大小(bp)PTPS-Intron1*F:5'-GGTGGTAAGGTCTCATAG-3'54I1844R:5'-CTGTGTCCGTAAGTTTTCC-3'PTPS-Exon1#F:5'-AGCACCGCAGACAGCGCCGGGAA-3'63E1232R:5'-ATCAGGATGCTGGAGGCCGTCCGA-3'PTPS-Exon2#F:5'-TTCTGACTCTCCCTTTGGTGAGCT-3'62E2327R:5'-GCATTCACACTGTGTCCGTAAGTT-3'PTPS-Exon3#F:5'-GTATGTTGCTAACTTGTGCTTGG-3'55.5E3275R:5'-AACACTTTGGTAGAGGAGAGGCCT-3'PTPS-Exon4#F:5'-GCACAGTCTCTGCACATTGTACTG-3'56.5E4250R:5'-GGAACCTTAGGAGATAACTGGTTG-3'PTPS-Exon5△F:5'-TAGTGGCTAAGTGATAAG-3'50E5543R:5'-TCAAACACAGAAAGAAAC-3'

注:*为扩增部分第1内含子[8]#为扩增部分第1~4外显子[5]为联合扩增部分第5、6外显子[9]

(1)热点突变的筛检。采用聚合酶链反应一限制性片段长度多态性(PCR-RFLP)分析方法[5]PTPS基因6个外显子及第1内含子的扩增引物见表1[5,8-9]。采用内切酶Tsp509 I对第2外显子的PCR产物E2进行酶切,以筛检N52S突变,携带该突变者因失去1个酶切位点而产生33 bp、111 bp和183 bp 3个片段。分别用BbvI和FokI对第5、6外显子的PCR产物E5进行酶切,以筛检P87S和D96N突变,携带这两个突变者分别失去BbvI和FokI酶切位点而仅有543 bp 1个片段。酶切产物用8%聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,银染后扫描分析。(2)PCR-序列分析法。对PCR-RFLP法筛检发现上述热点突变者,进一步通过相应外显子测序予以证实;对不存在热点突变者,扩增PTS基因第1~6外显子及部分第1内含子,PCR产物由上海生工技术有限公司进行产物纯化,应用3700测序仪进行测序,寻找基因突变。(3)基因新突变的确定。对未报道的基因新变异通过患儿基因双向检测及父母基因检测证实,并对50名正常儿童进行相应基因突变检测以排除多态性。

一、尿蝶呤分析

患儿尿蝶呤测定结果显示,尿新蝶呤(N)和生物蝶呤(B)分别为2.95 mmol/molCr(新生儿参考值为1.2~2.92 mmol/molCr), 0.08 mmol/molCr(新生儿参考值为0.42~1.92 mmol/molCr),B%为2.64%(新生儿参考值为19.8%~50.3%),由于N有所增加,B明显降低,N/B增高,B%<5%,疑诊为PTPS缺乏性的BH4D。

二、Phe+BH4联合负荷试验

患儿基础血Phe浓度为271.2 μmol/L,Phe负荷3 h时血Phe上升至756.0 μmol/L,血Phe浓度在BH4负荷后2、4、6 h逐步下降,分别为488.4 μmol/L、303.6 μmol/L、283.2 μmol/L,提示血Phe对BH4负荷有反应,由于血Phe浓度服用BH4后6 h已逐步下降至基础血Phe浓度水平,考虑确诊PTPSD。

三、DHPR活性测定

DHPR活性测定结果为1.71 nmol/(min·5 mm disc),正常参考值为1.02~3.35 nmol/(min·5 mm disc),为正常对照者活性的45%,从而排除DHPR缺乏症。

四、基因突变分析结果

PCR-RFLP法筛检发现患儿第5外显子存在c.259C>T(P87S)错义突变(图1),此突变使87位脯氨酸(Pro)变为丝氨酸(Ser);通过扩增PTPS基因所有外显子及第1内含子并测序,发现患儿第1内含子存在剪接位点突变IVS1-129A>G,即在第1内含子有-129bp处发生碱基A→G转换(图2),导致基因转录异常。同时对患儿父母进行突变测序,证实P87S杂合突变来自于母亲(图3),IVS1-129A>G杂合突变来自于父亲(图2),据此可认定患者携带两个PTPS突变,基因检测结果符合PTPSD临床诊断。

图1 患儿E5/BbvⅠ酶切产物
注:M2为DL2 000分子量标记;(-)为阴性对照;N为正常对照;CH为患儿

图2 突变IVS1-129A>G测序结果

图3 突变c.259C>T(P87S测序结果)

对50例正常儿童(100个等位基因)PTPS基因第1内含子进行测序,未发现存在IVS1-129A>G突变。经查阅国内外已发表专业文献及在BH4突变基因相关国际数据库( http://www.biopku.org/biomdb/search-results.asp)检索(图4、图5),证实IVS1-129A>G为国际上尚未报道的新突变。

BH4D是一种特殊类型的高苯丙氨酸血症(hyperphenylalaninemia, HPA),又称“非经典型PKU”或“恶性PKU”,其发病率各国报道不一。在白种人中BH4D约占HPA的1~2%[10],台湾约占19%,沙特阿拉伯约占66%[11]。中国南方地区BH4D占到HPA的12%~36.4%[4,12],远高于中国北方的研究报道[13]。中国86%的BH4D是由于PTPS缺乏所致,PTPS缺乏导致BH4合成障碍,苯丙氨酸蓄积,多巴、肾上腺素、5-羟色氨酸等生理活性物质缺乏,神经细胞髓鞘蛋白合成下降,机体免疫功能下降等,即使早期对患者进行低苯丙氨酸饮食治疗,血苯丙氨酸浓度降低至正常,其神经系统损害仍进行性加重。目前国内大多数BH4D患儿出生时临床表现基本正常,只是单纯性的表现为Phe浓度升高,患儿都是在接受低苯丙氨酸奶粉等饮食治疗无效,出现了发育落后、惊厥、吞咽困难、肌张力异常等严重神经系统损害时,才进行BH4D的诊断及鉴别诊断,由于BH4D的治疗方法不同于PKU,加上其易被漏诊或误诊,为做到早期诊断、早期治疗,建立科学、规范的HPA诊断程序就显得极为重要。

图4 BH4D-6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶(PTPS)基因突变类型

图5 BH4D-6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶(PTPS)基因内含子1突变类型
(http://www.biopku.org/biomdb/search-results.asp)

本例患儿经新生儿疾病筛查检出其Phe浓度偏高,第1次召回复查就采集患儿及其父母的血样、尿液,如复查Phe浓度仍旧偏高,首先确诊患儿为HPA;第2阶段就立即对患儿标本进行红细胞二氢蝶呤还原酶活性测定、尿蝶呤谱分析、BH4负荷试验或Phe和BH4联合负荷试验,目的为进行HPA鉴别诊断并进行病因分析,形成临床诊断及分型;第3阶段对患者及其父母进行基因突变分析予以确证。本研究对BH4D患者的诊断策略进行优化,基于目前本区新筛工作实际出发,大多数新筛采血机构与各新筛检测实验室距离偏远,血液、尿液等标本采集困难、标本递送周期较长,召回复查成本过高等因素,这些都极易导致BH4D患者诊断周期比较长,容易贻误患儿最佳治疗时机。因此,将PAHPTPSDHPR等基因突变分析纳入HPA的诊断及鉴别诊断程序,可为患儿进行快速早期的诊断,提供更直接的确诊依据,以期能尽早对其实施有效的治疗,避免严重的神经系统损害及智能障碍的发生。

Thony等[14]于1992年克隆了人PTPS基因,将其定位于人第11号染色体(11q22.3),全长约9 kb,共有6个外显子,编码145个氨基酸本研究发现患儿的PTPS基因存在c.259C>T(P87S)和IVS1-129A>G 2种突变,分别位于第5外显和第1内含子。顾梅青等[15]研究表明,对PTPS基因第5、2外显子和第1内含子进行4中热点突变检测,可大大提高基因诊断效率,降低成本,这与本研究结果较为一致。现有研究已表明,P87S为PTPS基因常见的错义突变类型,其可导致严重型PTPSD的临床表型[16]。IVS1-129A>G是本研究在世界范围首次发现的新突变类型,是由于第1内含子-129bp处发生碱基A→G转换,推测内含子剪接位点突变可能会导致mRNA保留一段内含子序列,由于氨基酸序列错位,导致翻译生成的肽链不能合成完整的PTPS而造成酶功能缺陷或丧失,根据患儿的临床症状和体征,初步评估IVS1-129A>G可能导致外周型PTPSD,这需要通过反转录聚合酶链式反应分析IVS1-291A>G改变对RNA剪接的影响和体外表达研究来予以进一步证实。

PTPSD是BH4D的主要病因,PTPS基因诊断是患儿诊断的必要有效手段,通过建立科学、严谨、规范的BH4D诊断及鉴别诊断程序,针对特点突变进行快速筛查,可使PTPSD患儿获得早期诊断和正确治疗,避免出现严重的神经系统损害,同时为患儿家庭的产前诊断和遗传咨询提供有力的实验数据支持。

参考文献

1 顾学范.新生儿疾病筛查.上海:上海科技技术出版社,2003:157-166.

2 Thony B,Auerbach G,Blau N.Tetrahydrobiopterin biosynthesis,regeneration,and functions.Bioehem J,2000,347:l-16.

3 Blan N,Barnes I,Dhondt JL.International database of tetrahydrobiopterin deficiencies.J Inherit Metab Dis,1996,19:8-14.

4 Liu TT,Chiang SH,Wu SJ,et al.Tetrahydrobiopterin-deficient hyperphenylalaninemia in the Chinese.Clin Chim Acta,200l,313:157-169.

5 Liu TT,Hsiao KJ,Lu SF,et al.Mutation anaIysis of the 6-pyruvoyl tetrahydropterin synthase gene in Chinese hyperphenylalaninemia caused by Tetrahydrobiopterin synthesis deficiency.Hum Mutat,1998,11:76-83.

6 Thony B,Blau N.Mutations in the BH4-metabolizing genes GTP cyclohydrolase I,6-pyruvoyl tetrahydropterin synthase,sepiapterin reductase,carbinolanine-4a-dehydratase,and dihydropteridine reductase.Hum Mutat,2006,27:870-878.

7 叶军,周建德,邱文娟,等.红细胞二氢蝶呤还原酶活性测定的建立和应用.检验医学,2006,21:48-51.

8 Oppllgar T,Thony B,Kluge C,et al.Identification of mutations causing 6-pyruvoyl-tetrahydroptedn synthesis deficiency in four Italian famiIies.Hum Mutat,1997,10:25-35.

9 Chien YH,Chiang SC,Huang A,et al.Treatment and outcome of Taiwanese patients with 6-pyruvoyl-tetrahy-dropterin synthase gene mutations.J Inherit Metab Dis,2001,24:815-823.

10 Scriver CR,Kaufman S,Eisensmish RC,et al.The hyperphenylalaninemias//Scriver CR,Beauder AL,Sly WS,et al.The metabolic and molecular basis of inherited disease.7th ed.New York:McGraw-Hill,1995:1015-1075.

11 Blau N,Barnes I,Dhondt JL.International database of tetrahydrobiopterin deficiencies.J Inherited Metab Dis,1996,19:8-14.

12 叶军,刘晓青,黄晓东,等.中国南方四氢生物蝶呤合成酶缺乏症筛查、临床及基因突变的系列研究.中华医学遗传学杂志,2001,18:92-99.

13 王琳,喻唯民,李晓雯,等.中国北方人群四氢生物蝶呤缺乏症的研究.中华医学遗传学杂志,2006,23:275-279.

14 Thony B,Leimbaeher W,Burgisser D,et al.Human 6-pyruvoyl-tetrahdropterin synthase:cDNA cloning and heterologons expression of the recombinant enzyme.Biochem Biophys Res Commun,1992,189:1437-1443.

15 顾梅青,叶军,邱文娟,等.55例6-丙酮酰四氢蝶呤合成酶缺乏症基因突变分析.中华医学遗传学杂志,2009,26:183-186.

16 Qu YJ,Song F,Jin YW,et al.Mutation analysis and one novel mutation detection of 6-pyruvoyl tetrahydrop-terin synthase gene in children with tetrahydrobioptedn deficiency.Acta Acad Med Sin,2008,30:170-174.

Tetrahydrobiopterin deficiency due to 6-pyruvoyl tetrahydropterin synthase deficiency:Diagnosis and a novel mutation identification

HE Jiang,YANG Xi,ZOU Hongyun,ZHANG Qiong,YU Wuzhong.

Institute of Clinical Medicine,Urumqi General Hospital of Lanzhou Command,PLA,Urumqi830000,China

[Abstract]ObjectiveTo characterize clinical presentation of a patient with mutations of 6-pyruvoyl tetrahydropterin synthase (PTPS) gene and to report the diagnosis of tetrahydrobiopterin deficiency (BH4D) in children with hyperphenylalaninemia (HPA).MethodsSymptoms and signs of a male patient were summarized and phenylalanine (Phe) levels were determined. The patient was subjected to combined Phe (100mg/kg) and BH4(20 mg/kg) loading test to evaluate the degree of Phe level response to BH4. Urinary neopterin and biopterin analysis as well as the determination of dihydropteridine reductase (DHPR) activity in dried blood spot were performed.PTPSgene was analyzed by PCR-restriction fragment length polymorphism and direct DNA sequencing.ResultsPhe level was 176.1 μmol/L within 72 h after birth. The patient presented with poor hand control and pale skin at 20th day after birth. His second Phe level was 222.6 μmol/L and he was diagnosed as HPA. Phe level increased to 756.0 μmol/L from baseline of 271.2 μmol/L at 3 h after taking Phe, and then decreased to 283.2 μmol/L at 6 h after taking BH4. Baseline urinary levels of neopterin and biopterin were 2.95 mmol/mol Cr and 0.08 mmol/mol Cr, respectively, and biopterin percentage was 2.52%. The patient had lower biopterin level. DHPR activity was 1.71 nmol/(min·5 mm disc), which was 45% of the normal control; so he was excluded diagnosis as DHPR deficiency. Genotyping showed that the patient carried a missense mutation c.259C>T (P87S) from his mother and splice site mutation IVS1-129A>G from his father. The IVS1-129A>G has not been reported in the literature.ConclusionThe patient with 6-pyruvoyl tetrahydropterin synthase deficiency was characterized by quick decreasing Phe levels at 6 h after BH4loading test, low urinary biopterin levels, low biopterin percentage (<10%), and normal DHPR activity. The IVS1-129A>G may be a new mutation ofPTPSgene.

[Key words]6-Pyruvoyl tetrahydropterin synthase (PTPS); Tetrahydrobiopterin deficiency (BH4D); Hyperphenylalaninemia (HPA); Mutation

作者单位:830000 乌鲁木齐,兰州军区乌鲁木齐总医院临床医学研究所

通讯作者:余伍忠(yuwz2013@126.com)

(收稿日期:2013-12-23)

(编辑:车艳)